Vocation:

Cytomètres FACScan (analyseur), et FACS Vantage (Trieur)

Microscope à épifluorescence Axioskope 2 muni d’une caméra numérique

Microscope confocal Olympus FV1000 avec balayage spectral

Les stations d’analyse d’images et de traitement des données.

Générales:

Formation d’usage des appareils, consultation sur la mise au point de protocoles et la mise en place de nouvelles applications.
Enseignement des bases théoriques de biophotonique, etc

Spécialisées:

Cytométrie préparative (trieur de cellules): séparation des cellules selon des critères définis par une combinaison de paramètres d’analyse.

Cytométrie analytique: révélation des antigènes cellulaires; analyse du cycle cellulaire; l’apoptose; l’influx de calcium, etc

Microscopie confocale: imagerie sur des coupes optiques non invasives ; la localisation subcellulaire de macromolécules; visualisation des flux ioniques (ex. Ca++) ; FRAP ; FRET etc

Microscopie à epifluorescence (et à contraste de phase): imagerie des marquages fluorescents et multicouleurs

Traitement d’image: l’amélioration de l’aspect visuel, l’extraction des informations pertinentes, l’analyse statistique, la déconvolution, etc

Suite à l'entretien préalable avec le chercheur ou l'étudiant intéressé, on établit le protocole de préparation des échantillons et l’on choisit des fluorochromes et des filtres appropriés. Si nécessaire, un bref cours d’introduction portant sur les principes de cytométrie/microscopie confocale est donné.

Une fois que la formation nécessaire est donnée à l’utilisateur, l’expérimentation se déroule avec l'assistance du responsable de service (optimisation des réglages, dépannage dans les cas de "petites" pannes, etc.).

Si nécessaire on discute des résultats (significativité, présentation etc.), et on les prépare pour la publication. Ensuite on donne des précisions pour les réponses aux arbitres d’une revue scientifique, si ces derniers demandent les précisions sur la section cytométrie/microscopie du manuscrit.